Obtén taxonomías del NCBI desde el terminal

Hola, en una entrada anterior comentaba cómo aprendimos a descargar datos del NCBI desde el terminal, usando el binario datasets, en mi caso para Linux. 

Hoy os cuento cómo se puede utilizar para obtener de manera sencilla la taxonomía completa correspondiente a un taxonID, como los que utiliza la base de datos https://www.ncbi.nlm.nih.gov/taxonomy . Lo explico con un ejemplo, buscando en dicho portal la primera especie que se me ocurre:

• En la página de resultados (ver imágen) paso el ratón sobre el nombre de la especie y me fijo en el navegador a qué URL me lleva, en este caso https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?id=56046 

• Deduzco que el taxonID de esta especie es el 56046
• Invoco el binario datasets con este identificador, obteniendo resultados en formato JSON:

       $ datasets summary taxonomy taxon 56046

 

{"reports": [{"query":["56046"],"taxonomy":{"children":[928733,928732,928731],"classification":{"class":{"id":58019,"name":"Pinopsida"},"domain":{"id":2759,"name":"Eukaryota"},"family":{"id":3318,"name":"Pinaceae"},"genus":{"id":3319,"name":"Abies"},"kingdom":{"id":33090,"name":"Viridiplantae"},"order":{"id":1446380,"name":"Pinales"},"phylum":{"id":35493,"name":"Streptophyta"},"species":{"id":56046,"name":"Abies pinsapo"}},"curator_common_name":"Spanish fir","current_scientific_name":{"authority":"Boiss., 1838","name":"Abies pinsapo"},"current_scientific_name_is_formal":true,"genomic_moltype":"dsDNA","group_name":"seed plants","parents":[1,131567,2759,33090,35493,131221,3193,58023,78536,58024,1437180,58019,3313,2821352,1446380,3318,3319],"rank":"SPECIES","tax_id":56046}}],"total_count": 1}

Cuando nos interesa solamente un taxonID es realmente más cómodo hacerlo en la Web, como se ha explicado. Esta operación tiene más sentido en el terminal cuando queremos hacerlo para toda una lista. Por ejemplo, podemos hacer una búsqueda con BLASTN contra la colección core_nt, obteniendo el taxonID de cada resultado en la columna 13:

$ blastn -query test.fna -db core_nt -outfmt "6 std staxids" -out results.tsv 

Con un comando como el siguiente podemos repetir la llamada a datasets para ese fichero:

$ perl -lane 'foreach $i (split(";",$F[12])){ $t=$see{$i}||`datasets summary taxonomy taxon $i`; printf("%s\t%s\t\%s",$F[0],$i,$t); $see{$i}=$t }' results.tsv

Hasta pronto, Bruno 

 

footprintDB March 2026 version

Hi, we just updated the motifs, transcription factors and sites in the database footprintDB. 

This version adds:

 

1)  Motifs inferred from  protein-DNA complexes at the Protein Data Bank, added to 3d-footprint by 19/08/2025; note the complexes are also used to annotate interface residues  of all transcription factors (TFs).

 

2) New plant data at EEADannot, with TFs assigned to Plant-TFClass families (see repo).

The current contents include:

 

The footprintDB motifs have also been synced with RSAT (see repo), see you soon,

Bruno

 

IV Jornada de Bioinformática en Aragón

Hola, el 13 de febrero la USJ organizó otro año más la Jornada de Bioinformática en Aragón, esta vez al mando de Paula Esquivias. Esta vez fuimos varias personas del grupo, entre ellos Rubén Sancho, que dió la charla plenaria con la que cerró el evento. Aquí van mis notas.

  

En sus estudios de múltiples taxones de plantas, el grupo de Aureliano Bombarely  ha encontrado que https://github.com/xjtu-omics/ANNEVO es un anotador genómico de novo, de esos que mapea secuencias de proteína conocidas sobre genomas sin anotar, que generaliza bien con proteínas de hasta 80M años de distancia dentro de Brassicáceas, pero en cambio falla en helechos. Un anotador basado en evidencias como BRAKER3 va mejor en este caso.

Continuando trabajos como https://doi.org/10.1093/molbev/msaf148, están usando FANTASIA en plantas, subiendo el % de proteínas con algún término GO asignado del 80% al 99% en Arabidopsis thaliana. Explica ejemplos de alucinación porque la versión actual de FANTASIA siempre te asigna algún GO.

Menciona al final un estudio del efecto de los transposones en la domesticación del arroz (https://doi.org/10.1016/j.xplc.2021.100270) que usa https://github.com/yanhaidong1/TEmarker.

En la mesa redonda de mujeres en bioinformática, Fátima Al-Shahrour, Rebeca Sanz-Pamplona, mi compañera Inmaculada Yruela y Ana Conesa nos entretuvieron contando detalles de sus trayectorias personales en la ciencia y lo que habían disfrutado haciendo formación y divulgación de sus trabajos por todos los rincones del mundo. Terminaron recordando a los más jóvenes la necesidad de poner la pregunta científica antes que los métodos.

 

Antes del café conocimos algunas empresas e instituciones locales como biamics.es (sede en Zaragoza), ita.es (da soporte a empresas,  4 ramas, la más cercana es tech digital con 80 personas) u origen.bio/origen-genetics (genomas personales para personalizar salud y nutrición).

En la mesa one health,  Luis Mata, Enrique Navarro,  Sarah Delacour y Laura Espina hablaron de los problemas a los que se enfrentan empresas y administraciones a la hora de compartir y gestionar datos de investigación en un marco de confianza. Las empresas tienen derecho a los datos públicos, pero son reacias a hacer públicos según qué datos porque les pueden causar daños de imagen pública, deben anoninimizarse. 

La jornada terminó con la charla magistral de Rubén Sancho, actualmente postdoc en nuestro departamento, titulada "Herramientas bioinformáticas aplicadas a estudios evolutivos y mejora genética en plantas", donde resumió más de 10 años de trabajo descifrando las relaciones evolutivas entre especies del genéro Brachypodium (modelo para cereales) y sus firmas transcripcionales en estrés hídrico, mostrando al final trabajos más recientes en cebada. Entre las herramientas que desarrolló explicó con cierto detalle chloroplast_assembly_protocol (ya superado por otras herramientas), phyloSD y AlloSHP. La siguiente figura, tomada de la charla de Rubén, muestra las tripas de AlloSHP (10.1186/s13007-025-01458-6) y cómo partiendo de mapeos de lecturas en genomas de diploides podemos llegar a SHPs, Single Homeologous Polymorphisms, que permiten estudiar la evolución de subgenomas en especies poliploides:  

Los artículos los podéis encontrar en scholar.

adiós a Peer Bork

Hola, igual esta semana habéis leído por ahí que nos dejaba Peer Bork, que era actualmente unos de los directores interinos del EMBL. Yo me enteré por una nota de prensa, de la que saqué la foto que pego más abajo. En las redes podéis leer testimonios de sus colegas, como en este hilo. Sí vale la pena recordar que fue uno de los integrantes del famoso grupo de Chris Sander en el EMBL, por el que pasaron muchos pioneros de la biología computacional, como por ejemplo Alfonso Valencia.

Yo no le conocí personalmente, pero le escuché en alguna conferencia y sobre todo me encontré con regularidad con artículos y recursos importantes que producía su grupo y que han sido muy importantes para la comunidad. Enumero aquí algunos de ellos por si no los conocíais, podéis ver la lista completa de publicaciones en scholar:

• filogenias en base al contenido de genes, no secuencias [https://doi.org/10.1038/5052, 1999]
  
• STRING, una base de datos de interacciones conocidas y predichas entre proteínas [https://doi.org/10.1093/nar/28.18.3442, 2000]
• eggNOG para anotación automatizada de genes ortólogos a medida que se publican nuevos genomas, que desde hace tiempo creo que gestiona Jaime Huerta desde el CBGP (UPM-INIA/CSIC) [https://doi.org/10.1093/nar/gkm796, 2007]
• iTOL para construir y visualizar filogenias de todos los seres vivos (Tree of Life) a partir de la comparación de secuencias de genes compartidos [https://doi.org/10.1126/science.1123061, 2007]

https://www.embl.org/news/embl-announcements/in-remembrance-of-peer-bork

 

Descansa en paz, y un abrazo a los heridas y familias del descarrilamiento 😢

NCBI Blast 2.17.0+ es más rápido y acepta FASTAs comprimidos

ola de nuevo.

Siguiendo con la serie de entradas sobre BLAST en este blog, hoy os comento que mientras actualizaba el código de https://github.com/eead-csic-compbio/get_homologues he descubierto que había una versión de NCBI Blast, la 2.17.0+, publicada el pasado verano. 

Revisando la lista de cambios respecto a la versión anterior me llamaron la atención estos dos:

1. makeblastdb supports compressed FASTA in gzip, bzip2, and zstd formats
2. Improved search speed of blastp with -task blastp-fast

La primera resuelve un problema que me ha afectado muchas veces, y evita que tengas que descomprimir un fichero FASTA de gran tamaño antes de indexar un conjunto de secuencias, una operación que a veces tarda mucho tiempo.

La segunda, que en realidad se estrenó en la versión 2.2.30+, permite acelerar las búsquedas con blastp, blastx y tblastn. Según los autores, acelera las búsquedas contra la colección no redundante de proteínas (nr) un 20%, siendo 2-3x más rápido con colecciones más pequeñas como swissprot o pdbaa. Para blastp y blastx se pierde un 3% de sensibilidad.

Hice una prueba rápida en mi máquina:

time ncbi-blast-2.17.0+/bin/blastp -task blastp-fast -query fnr.faa \
	-db sprot.fasta -outfmt 6 > f

real    0m1.113s
user    0m0.713s
sys    0m0.028s

time ncbi-blast-2.17.0+/bin/blastp -task blastp -query fnr.faa \
	-db sprot.fasta -outfmt 6 > s

real    0m3.945s
user    0m2.925s
sys    0m0.040s

wc -l s f
  113 s
   32 f

diff <(head -30 s) <(head -30 f)

Observo que los primeros 30 resultados son idénticos en ambas búsquedas, y que la estrategia -task blastp en este caso es mucho más sensible, produciendo 81 alineamientos más, todos ellos cortos y con identidades bajas. Si no necesitas estos últimos -task blastp-fastp es para ti.

Hasta pronto,

Bruno